實驗動物大、小鼠的采血方法

1、動物實驗中剪尾采血：需血量少時可用此方法。將動物固定，顯露尾部，將尾塵剪去約5mm，從尾根部向尾端部，血即從斷端流出。若用二棉球涂擦尾部或事先將鼠尾浸在45℃水中數(shù)分鐘，動物實驗室，使尾部血管充盈，可采到較多的血，但注意二可致溶血。也可用鋒利刀片割破尾動脈或尾靜脈，讓血液自行流出，采血后，消毒，止血。如將動物取血量可更多些。小鼠每次采血約0.1ml，大鼠約0.4 ml。為了多次反復(fù)取血應(yīng)盡量從鼠尾末端開始。

2、動物實驗中摘眼球采血：此法常用于鼠類大量采血。用左手固定動物，壓迫眼球，盡量使眼球突出，右手用無鉤彎鑷子或彎止血鉗迅速摘除眼球，立即將鼠倒置，頭朝下，眼眶內(nèi)很快流出血液。一般只適用于一次采血。大部動物采血后可以存活，可采另一側(cè)眼球取血。

大鼠后眼框靜脈叢取血方法

4、動物實驗中頸靜脈或頸動脈采血：將鼠，實驗動物，剪去一側(cè)頸部外側(cè)被毛，作頸靜脈或頸動脈分離手術(shù)，用即可抽出所需血量。也可插入導(dǎo)管，反復(fù)采血。

5、斷頭采血：操作者左手拇指和食指握住鼠頸部，動物實驗外包，頭朝下，用利剪在頭頸間1/2處迅速剪動物頭部，提起動物，血液即可流入準(zhǔn)備好的容器中。

6、心臟采血：將動物，使其仰位固定，動物實驗，剪去胸前區(qū)毛，消毒皮膚，在左側(cè)第3—4肋間選擇心博強(qiáng)處穿刺，血液借心臟跳動的力量進(jìn)入。亦可在動物后，切開動物胸腔，直視心臟內(nèi)抽血或剪破心臟，直接用、吸管等吸血。

心率shi常模型

房室傳導(dǎo)阻滯和房室交接區(qū)傳導(dǎo)常性心律shi常多選用狗、貓，在ma醉開胸暴露心臟的情況下，于距犬心尖部1.5~ 2cm處的左室心肌內(nèi)注入熱生理鹽水(80~90C)或95%酒精、25%硫酸10~ 15ml (貓和兔注入4~ 7ml)，引起心肌大片的局部壞死性。也可在狗的房室交接部( 即在左心房下部、心房、下腔靜脈和前房室溝三者交匯點(diǎn)的前上方約0. 5cm處)，用注射針頭垂直刺入房間隔下部房室結(jié)區(qū)，緩緩注入95%或無水酒精2~ 5ml，造成核處組織壞死。還可采用豚鼠，自左心耳向左房內(nèi)注射腺苷5 Hg， ，注后1秒鐘左右，即出現(xiàn)典型的II度或II度以上的傳導(dǎo)阻滯，較嚴(yán)重時，房室完全停搏，停搏時間與劑里呈平行關(guān)系，心率和心律僅在數(shù)秒或十幾秒即可恢復(fù)。此模型重復(fù)性好，但傳導(dǎo)阻滯持續(xù)時間短，不易用其進(jìn)行觀察，如果注射腺苷劑里大，則傳導(dǎo)阻滯不易復(fù)原。除豚鼠外，腺苷對其他動物一般不引起傳導(dǎo)阻滯。

醫(yī)學(xué)實驗中按特定設(shè)計用動物模擬人體的一種模型。一般用于毒理、藥理、病理、生理甚至心理的實驗研究。醫(yī)學(xué)的許多實驗研究不允許或沒有必要直接在人體上進(jìn)行，可以根據(jù)需要，在實驗控制條件下，在動物身上制造出類似人體上的毒理、藥理、清理、生理過程以研究其機(jī)制和規(guī)律。實驗動物常用的有小鼠、大鼠、家兔、狗、猴等。小動物模型多用于篩選實驗，大動物模型多用于實驗和機(jī)理的研究。中現(xiàn)代研究中越來越多地運(yùn)用著動物模型，并正形成符合中原理的新的動物模型和造模方法。



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