三（羥）Tris緩沖液為弱堿性溶液，DNA在這樣的溶液中會被去質(zhì)子化，從而提高其溶解性。人們常常在Tris鹽酸緩沖液中加入EDTA制成“TE緩沖液”，TE緩沖液被用于DNA的穩(wěn)定和儲存。如果將調(diào)節(jié)pH值的酸溶液換成，則獲得“TAE緩沖液”（Tris/Acetate/EDTA），而換成硼酸則獲得“TBE緩沖液這兩種緩沖液通常用于核酸電泳實驗中。

 此外，一些緩沖體系對溫度非常敏感，例如Tris-HCl緩沖液，如果你在25℃時將緩沖體系調(diào)至pH值8，pH值將在5℃時增加到8.58而在37℃時降到7.71。所以，如果打算在4℃條件下保存蛋白或在37℃進行實驗，就應(yīng)該考慮到室溫下調(diào)的pH值可能在實驗條件中就不適用了。  其他類型的色譜分離柱，如凝膠過濾柱和Ni2 親和層析柱，可能需要更高的鹽濃度。我一般用高達500 mM NaCl進行高鹽淋洗，以防止蛋白和柱之間的非特異性結(jié)合。

8mol/L乙酸鉀（potassium acetate）：溶解78.5g乙酸鉀于足量的水中，加水定容到100ml。

1mol/L（KCl）：溶解7.46g于足量的水中，加水定容到100ml。

3mol/L乙酸鈉（sodium acetate）：溶解40.8g的三水乙酸鈉于約90ml水中，用冰乙酸調(diào)溶液的pH至5.2，再加水定容到100ml。

0.5mol/L EDTA:配制等摩爾的Na2EDTA和NaOH溶液（0.5mol/L），混合后形成EDTA的三鈉鹽。或稱取186.1g的Na2EDTA·2H2O和20g的NaOH，并溶于水中，定容至1L。