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果實(shí)RNA提取-武漢友名生物

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發(fā)布時(shí)間:2022-03-09 07:03  






水中微生物DNA提取試劑盒,樣本制備步驟。


步驟1. 樣本過濾

1.1 從試劑盒中小心取出濾膜。用水樣潤濕濾膜。

1.2 將濾膜放置在濾器中,并過濾必要體積的水樣。

步驟2. 菌體裂解

* 提前準(zhǔn)備:預(yù)先將恒溫儀設(shè)置到70℃,將恒溫箱設(shè)置到37℃。

2.1將樣本過濾后的濾膜翻轉(zhuǎn)放置到試劑盒提供的IncubationDish(平皿)中。

2.2 吸取2mllysis buffer(裂解液),并加到濾膜上。

2.3 將濾膜浸泡在裂解液中,小心搖勻平皿并在37°C孵育30分鐘。

2.4 用平皿中的裂解液沖洗濾膜,并搖晃平皿10秒鐘。

2.5 將平皿中的400μl裂解液轉(zhuǎn)移至IncubationTube(孵育管),70°C孵育10分鐘。

2.6 樣本短暫離心,并加入400μl Binding Buffer(結(jié)合液),立即渦旋充分混勻,以防止DNA沉淀。請(qǐng)勿離心樣本,并立即進(jìn)行下一步。

步驟3. DNA提取

3.1 將步驟2.6中的混合液(~800μl)轉(zhuǎn)移到CollectionTube(收集管)內(nèi)的SpinColumn(離心柱)中,小心液體不要沾到離心柱的邊緣。

3.2 離心柱離心≥10000× g,1分鐘。棄掉收集管中的液體。重新將離心柱插到原有的收集管中。

3.3 離心柱中加入500μl洗液1。離心≥10000×g,1分鐘。棄掉收集管中的液體。重新將離心柱插到原有的收集管中。

3.4 離心柱中加入500μl洗液2。離心≥10000×g,1分鐘。棄掉收集管中的液體。將離心柱插到一個(gè)新的收集管中。

3.5 zui大速度離心3分鐘,以去除殘留的洗液2。

3.6 棄掉收集管。

3.7 吸取60μl已70℃預(yù)熱的洗脫液,直接加到離心柱的硅膠膜上。硅膠膜表面應(yīng)全部覆蓋洗脫液。

3.8 室溫靜置2分鐘,然后離心8000×g,2分鐘,以洗脫DNA。

3.9 樣本保存管中的洗脫液即包含DNA,可直接用于PCR,或儲(chǔ)存在2~8℃,可存放1周。長期儲(chǔ)存是在≤-18℃。





選擇素elisa試劑盒的實(shí)驗(yàn)原理


選擇素elisa試劑盒是一類異親型結(jié)合、Ca2 依賴的細(xì)胞粘著分子,果實(shí)RNA提取,能與特異糖基識(shí)別并結(jié)合。主要參與白細(xì)胞與血管內(nèi)皮細(xì)胞之間的識(shí)別與粘著。

實(shí)驗(yàn)原理:

將目標(biāo)包被于96孔微孔板中,制成固相載體,向微孔中分別加入品或標(biāo)本,其中的目標(biāo)連接于固相載體上的結(jié)合,然后加入微生物化的目標(biāo),將未結(jié)合的生物素洗凈后,加入HRP標(biāo)記和親和素,再次洗滌后加入TMB底物顯色。TMB在過氧化物酶的催化下轉(zhuǎn)化成藍(lán)色,并在酸的作用下轉(zhuǎn)化成終的。顏色的深淺和樣品中的目標(biāo)呈正相關(guān)。用酶1標(biāo)儀在450nm波長下測定吸光度(O.D.值),計(jì)算樣品濃度。

精密度:精密度用樣品測定值的變異系數(shù)CV表示。CV(%)=SD/mean×100

批內(nèi)差:取同批次選擇素elisa試劑盒對(duì)低、中、高值定值樣本進(jìn)行定量檢測,每份樣本連續(xù)測定20次,分別計(jì)算不同濃度樣本的平均值及SD值。

批間差:選取3個(gè)不同批次的試劑盒分別對(duì)低、中、高值定值樣本定量測定,每個(gè)樣本使用同一試劑盒重復(fù)測定8次,分別計(jì)算不同濃度樣本的平均值及SD值。

批內(nèi)差: CV<10% Inter-批間差: CV<13%

經(jīng)測定,試劑盒在X期內(nèi)按推薦溫度保存,其活性率小于5%。為減小外部因素對(duì)試劑盒前后檢測值的影響,實(shí)驗(yàn)室的條件需盡量保持一致,尤其是實(shí)驗(yàn)室內(nèi)溫度、濕度及溫育條件。其次由同一實(shí)驗(yàn)員來進(jìn)行操作可人為誤差。

選擇素elisa試劑盒識(shí)別的配體都是一些寡糖基團(tuán),迄今為止發(fā)現(xiàn)的配體都是一些具有唾液酸化路易斯寡糖(s-Le,siaglyl-Lewis)或類似結(jié)構(gòu)的分子。一種寡糖基團(tuán)可以存在多種糖蛋白和糖脂分子上,并分布于多種細(xì)胞表面,因此選擇素分子配體在體內(nèi)分布較為廣泛。




PCR方法已廣泛用于科研,在工業(yè)中也有不斷擴(kuò)大應(yīng)用的趨勢,它包括檢測一些病原體、檢測支原體污染、檢測細(xì)菌污染以及檢測殘留宿主DNA等。

PCR在工業(yè)中的應(yīng)用主要存在一個(gè)方法驗(yàn)證的問題,尤其是靈敏度的驗(yàn)證。靈敏度不夠,就會(huì)發(fā)生漏檢。另外,PCR所直接面對(duì)的樣本是DNA,而非病原菌或DNA,因此還需要做DNA抽提,這也是要注意的。


因此,如能采用PCR檢測支原體并替代藥典方法,還是能節(jié)省很多時(shí)間和精力。但PCR方法的驗(yàn)證需要較為完整。靈敏度驗(yàn)證是一個(gè)重要方面。靈敏度不夠,就會(huì)發(fā)生漏檢?!稓W洲藥典》第2.6.7章(EP 2.6.7)和《日本藥典》第十七版第G3章(JP G3),都規(guī)定,對(duì)于核酸擴(kuò)增法(如PCR)檢測支原體,如替代傳統(tǒng)的培養(yǎng)法,都要求檢測限達(dá)到10 CFU/ml。

具體驗(yàn)證可使用10CFU的支原體靈敏度標(biāo)準(zhǔn)品,它一般為凍干粉形式,需要用待測樣本的樣本基質(zhì)(需保證里面不含支原體)來復(fù)溶,再進(jìn)行DNA抽提以及PCR檢測。如檢測的電泳有條帶,或者qPCR檢測后的Ct值小于40,即表明檢測成功。




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